专家点评PNAS | 酒亚明团队揭示宿主细胞中间丝在寨卡病毒感染中的双重作用

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关键词: 揭示
资讯来源:BioArt
发布时间: 2022-02-27
专家点评 | 姚雪彪 教授中国科技大学  程功 教授 (清华大学)

责编 | 酶美


寨卡病毒(Zika virus, ZIKV)是带包膜的单链正义RNA的黄病毒属病毒,因其感染会导致新生儿小头畸形、格林-巴利综合征等神经型疾病而被广泛关注【1-4】。ZIKV进入胞内后会在内质网膜进行复制,产生大量双链RNA、病毒基因组RNA和病毒蛋白,这些病毒组分和被劫持的宿主因子一起在核周聚集形成病毒复制工厂以提供高效的病毒复制【5-7】,但是在此过程中发生剧烈重构的宿主细胞骨架发挥怎样的生物功能尚不清楚。


细胞骨架包括微丝、微管和中间丝,三者互相交织形成网络为细胞内提供机械支撑,参与细胞器定位、物质运输、信号传导等重要生物过程【8,9】。波形蛋白 (vimentin filaments) 属于细胞骨架中间丝,主要围绕细胞核向细胞边缘辐射状分布。近年来一些研究发现vimentin filaments在病毒感染中会发生重构向核周聚集,但是其在ZIKV感染过程中的动态变化及其生物功能尚不清楚。除此之外,细胞骨架蛋白还能参与调节胞内转录翻译机器【10】。但是中间丝vimentin与胞内转录翻译机器之间的物理空间和生物功能上的关系尚不清楚,尤其在病毒感染情况下,vimentin filaments与病毒复制工厂形成的联系完全未知。


2022年2月22日,中国科学院上海巴斯德研究所酒亚明课题组在PNAS发表了题为Host cytoskeletal vimentin serves as a structural organizer and an RNA-binding protein regulator to facilitate Zika viral replication的文章,该研究利用多种显微成像技术和组学分析,首次阐述了中间丝波形蛋白vimentin在寨卡病毒感染中的物理空间支撑与生物功能调控的双重作用。



研究人员首先利用共聚焦显微镜、活细胞实时观察、超高分辨率显微镜和电镜等生物成像技术观察到随着ZIKV感染时间的延长,细胞内vimentin filaments逐渐向核周聚集,形成笼状结构以包裹病毒复制工厂组分如dsRNA、NS4B和Env (图1)内源表达病毒蛋白Env也能诱导vimentin filaments产生类似的现象。


图1. Vimentin filaments围绕ZIKV病毒蛋白形成笼状结构


之前就有一些文章报道了vimentin filaments在多种病毒感染中均会出现类似重构现象【11-17】,为了进一步研究这一变化的具体意义和机制,研究人员利用CRISPR/Cas9技术敲除人骨肉瘤细胞系U2OS和人肝癌细胞系Huh7中的vimentin后,发现病毒复制工厂组分NS4B、Env或dsRNA的胞内定位由核周聚集变为呈多块分散 ,并使病毒RNA复制、蛋白合成、子代病毒产生量和整体感染率都显著降低。有趣的是,只有在敲除细胞中回补全长vimentin才能使病毒复制工厂在被vimentin filaments的包裹下重新向核周聚集成团,回补只能形成八聚体(unit length of filaments,ULF)不能成丝的vimentin不能挽救其分散表型。除此之外,研究人员发现ZIKV感染后细胞内另一中间丝巢蛋白(nestin filaments)和波形蛋白一起发生了向病毒复制工厂聚集的变构,但是单敲除nestin基因并不影响ZIKV的复制,而单敲除vimentin不仅影响nestin的表达还影响病毒复制工厂的定位。这些结果表明vimentin保证了ZIKV复制工厂的高密度核周聚集,是病毒高效感染的必要条件,并且其功能在细胞多种中间丝中具备独特型和重要性。


为了进一步研究vimentin具体影响了ZIKV病毒感染的哪些步骤,研究人员在野生型和vimentin敲除细胞系中做了不同感染时间点实验,和病毒结合/进入细胞实验,结果发现敲除vimentin并不影响ZIKV结合或进入细胞,但会使病毒蛋白积累量持续低于野生型细胞。为了辨别这种病毒蛋白的降低是合成减少还是降解增加,研究人员分别在两种细胞内过表达病毒Env-EGFP和NS4B-EGFP蛋白,并分别用蛋白合成抑制剂cyclohemide (CHX)、蛋白酶体抑制剂MG132、溶酶体抑制剂NH4Cl处理,结果发现vimentin影响了病毒蛋白合成而非降解。


因为vimentin filaments正常情况下和ZIKV感染情况下的细胞内定位与内质网高度重合,且敲除vimentin使内质网分布更加扩散,提示vimenitn和内质网之间存在重要联系。研究人员利用质谱结果进行蛋白质组学分析发现胞内vimentin和大量位于内质网的RNA结合蛋白(RNA-binding proteins, RBPs)存在互作。进一步RNA测序组学分析发现,相对于野生型细胞,vimentin敲除细胞感染病毒后大量内质网相关的具备双链RNA结合功能和转录调节功能的基因表达发生显著下调,这些结果进一步印证了vimentin参与寨卡病毒RNA复制过程。综合两种组学分析结果,研究人员将目光聚焦于内质网上一跨膜蛋白核糖体结合蛋白1(ribosome-binding protein 1, RRBP1),并利用蛋白质体外结合实验(pull-down assay)验证了vimentin和RRBP1相互作用。在2019年就有文章报道RRBP1能直接结合病毒RNA从而帮助黄病毒复制,缺失RRBP1基因使胞内寨卡病毒RNA水平下降约40%【18】。为了探究vimentin和RRBP1分子在ZIKV感染中的关系,作者在野生型细胞和vimentin敲除细胞中分别敲低RRBP1基因表达,观察两者胞内表达和定位情况,并对比ZIKV在其中的感染情况。结果发现缺失vimentin使RRBP1在mRNA和蛋白质水平均下降约50%,且RRBP1和内质网信号在胞内定位更加分散,出现了类似病毒复制工厂分散的现象,虽然RRBP1与内质网共定位关系不变,但RRBP1与ZIKV dsRNA共定位水平显著下降。这说明vimentin对于ZIKV感染后内质网的精细变构发挥重要作用,使病毒复制工厂保持致密结构,并聚集其余宿主分子如参与病毒转录翻译的ER相关蛋白使其保持高效复制。反之RRBP1敲低却不影响vimentin的转录翻译水平和胞内定位。单独敲除vimentin使病毒复制下降的水平远大于单独敲除RRBP1,且和双敲除的抑制效率类似,这表明vimentin可能作为RRBP1上游分子调控其参与病毒RNA复制过程。


纵观整篇文章,这项研究揭示了在受到寨卡病毒感染后,细胞中间丝波形蛋白网络会逐渐向核周聚集形成笼状结构包裹病毒复制工厂,汇聚重要的宿主因子和病毒组分,与众多内质网蛋白互作如RRBP1以促进病毒RNA复制,从而同时在物理空间和生物功能上帮助病毒在胞内形成完整致密的病毒复制工厂以促进病毒产生,这提示vimentin可作为ZIKV感染治疗的潜在宿主靶点。


图1. Vimentin filaments在ZIKV病毒感染过程中作为‘结构支撑’和‘调节因子’的双重功能


中国科学院上海巴斯德研究所博士生张悦为该文章第一作者;中国科学院上海巴斯德研究所酒亚明研究员、金侠研究员为该文章的共同通讯作者;中国科学院生物物理研究所薛艳红研究员和中国科学院上海巴斯德研究所崔杰研究员为该文章的样品制备和数据收集提供了支持;该研究也得到了芬兰Åbo Akademi University的John E. Eriksson教授、中国科学院分子细胞科学卓越创新中心的鲍岚研究员与朱学良研究员的支持和帮助。



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专家点评

细胞骨架专家、中国科技大学姚雪彪教授


细胞骨架决定细胞形态、极性与细胞器运输。目前,细胞骨架研究大多数聚焦骨架支撑相关功能例如细胞迁移、胞内物质运输、形成特殊细胞结构等,但对细胞骨架与细胞蛋白翻译机器如内质网、高尔基体的研究相对较少,特别是中间丝蛋白vimentin和内质网之间的功能性研究基本空白。


酒亚明研究员团队通过系统分子动力学光学成像技术,展示了中间丝蛋白vimentin 骨架如何承载寨卡病毒ZIKV在宿主细胞中的动态变化,并通过回补不同形式vimentin证明了完整的具备动态性的vimentin丝状结构在维持ZIKV复制工厂完整性的重要性。除了描绘出vimentin骨架在病毒感染过程中的时空变化和物理支撑作用,本文章还通过组学分析和体外验证实验向人们揭示了vimentin不仅影响内质网ER的细胞内定位,还和包括RRBP1在内的位于ER上的RNA结合蛋白存在互作,这种生物功能性的调节和其空间物理的支撑,两者相辅相成共同促进了病毒的高效复制机制。这项研究揭示了在病毒与宿主细胞互动机制研究,为解析宿主细胞易感性及其与vimentin和内质网关联机制提供了契机。鉴于中间丝蛋白vimentin 骨架参与上皮与表皮细胞极性建立与稳态维系,该研究为解析寨卡病毒ZIKV在细胞间运动与感染的扩增提供了有效技术平台。


专家点评

病毒学专家、清华大学程功教授


近年来,寨卡病毒在世界范围内感染流行,引起严重的公共健康威胁。寨卡病毒感染宿主细胞时,会劫持宿主的细胞器结构网络并改变宿主的代谢途径,形成病毒特殊而精密的复制工厂,来高效的完成病毒复制过程。细胞骨架特别是中间丝在病毒复制工厂形成中起到重要作用,但其发挥作用的具体过程和机制并不清楚。


该项研究使用了多种显微成像技术和联合组学的分析方法揭示了波形纤维蛋白(vimentin)在寨卡病毒复制工厂形成过程中的双效作用;不仅在物理空间上保证病毒复制工厂的完整性,还通过调控重要的宿主因子以促进病毒RNA复制,保证病毒高效完成其生命周期。目前寨卡病毒仍无有效的治疗性药物或商业疫苗上市,这项研究首次阐述了vimentin在寨卡病毒感染复制过程中的重要功能,提示vimentin及其相关蛋白可作为潜在靶点来进行后续治疗性药物的研究。深入了解病毒精细的复制过程,可以增进我们对病毒和细胞宿主间相互关系的理解,也为今后筛选靶向宿主因子的广谱抗病毒药物奠定基础。


原文链接:

https://www.pnas.org/content/119/8/e2113909119


制版人:十一


参考文献


1. V. M. Cao-Lormeau et al., Guillain-Barre Syndrome outbreak associated with Zika virus infection in French Polynesia: a case-control study. Lancet 387, 1531-1539 (2016).

2. T. C. Pierson,B. S. Graham, Zika Virus: Immunity and Vaccine Development. Cell 167, 625-631 (2016).

3. S. A. Rasmussen, D. J. Jamieson, M. A. Honein, L. R. Petersen, Zika Virus and Birth Defects--Reviewing the Evidence for Causality. N Engl J Med 374, 1981-1987 (2016).

4. T. C. Pierson,M. S. Diamond, The emergence of Zika virus and its new clinical syndromes. Nature 560, 573-581 (2018).

5. C. J. Neufeldt, M. Cortese, E. G. Acosta, R. Bartenschlager, Rewiring cellular networks by members of the Flaviviridae family. Nat Rev Microbiol 16, 125-142 (2018).

6. M. Cortese et al., Ultrastructural Characterization of Zika Virus Replication Factories. Cell Rep 18, 2113-2123 (2017).

7. M. I. Mohd Ropidi, A. S. Khazali, N. Nor Rashid, R. Yusof, Endoplasmic reticulum: a focal point of Zika virus infection. Journal of biomedical science 27, 27 (2020).

8. J. Lowery, E. R. Kuczmarski, H. Herrmann, R. D. Goldman, Intermediate Filaments Play a Pivotal Role in Regulating Cell Architecture and Function. The Journal of biological chemistry 290, 17145-17153 (2015).

9. F. Danielsson et al., Vimentin Diversity in Health and Disease. Cells 7, (2018).

10. S. Kim,P. A. Coulombe, Emerging role for the cytoskeleton as an organizer and regulator of translation. Nat Rev Mol Cell Biol 11, 75-81 (2010).

11. K. Dohner,B. Sodeik, The role of the cytoskeleton during viral infection. Curr Top Microbiol Immunol 285, 67-108 (2005).

12. K. Y. Foo,H. Y. Chee, Interaction between Flavivirus and Cytoskeleton during Virus Replication. BioMed research international 2015, 427814 (2015).

13. C. E. Denes, M. Miranda-Saksena, A. L. Cunningham, R. J. Diefenbach, Cytoskeletons in the Closet-Subversion in Alphaherpesvirus Infections. Viruses 10, (2018).

14. Y. Zhang et al., The Role of Host Cytoskeleton in Flavivirus Infection. Virol Sin 34, 30-41 (2019).

15. I. Ramos, K. Stamatakis, C. L. Oeste, D. Perez-Sala, Vimentin as a Multifaceted Player and Potential Therapeutic Target in Viral Infections. Int J Mol Sci 21, (2020).

16. Y. Zhang et al., The diverse roles and dynamic rearrangement of vimentin during viral infection. J Cell Sci 134, (2020).

17. Z. Wen et al., Cytoskeleton-a crucial key in host cell for coronavirus infection. J Mol Cell Biol (2020).

18. Y. S. Ooi et al., An RNA-centric dissection of host complexes controlling flavivirus infection. Nat Microbiol 4, 2369-2382 (2019).

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